Máster presencial
Mollet Del Vallès (Barcelona)
Duración : 6 Meses
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Objetivos
Con el Máster en microbiología se pretende conseguir una alta capacitación teórico-práctica tanto en metodología mircobiológica, como en la interpretación de los resultados analíticos en los sistemas de calidad que se deben aplicar en los distintos laboratorios microbiológicos. El alumno adquirirá los conocimientos necesarios en as distintas áreas donde la aplicación de la mircobiología es indiscutible, esto es, sector clínico, sector farmacéutico, sector biotecnológico, sector ambiental.
A quién va dirigido
Este máster va dirigido a personas en posesión de una titulación universitaria en áreas como la Biología, la Farmacia, la Biotecnología, la Alimentación o la Veterinaria.
Requisitos
Estar en posesión de una titulación universitaria.
Temario completo de este curso
Microbiología General (80 horas: 60 h teoría y 20 h práctica)
1. Introducción a la microbiología
2. Los microorganismos: definición y tipos: las bacterias, los virus, los hongos y los parásitos
3. La estructura bacteriana:
4. El crecimiento microbiano:
§ Fases del crecimiento
§ Factores que influyen en el crecimiento
§ La ecuación de Monod
§ El crecimiento microbiano continuo: el quimiostato y el turbidostato
§ La medición del crecimiento microbiano
5. El cultivo y aislamiento de microorganismos
6. El análisis microbiológico
7. Desinfección y esterilización
8. Taxonomía bacteriana
9. Las bacterias gramnegativas
10. Las bacterias grampositivas
11. Los hongos: mohos y levaduras
12. Los virus
13. Los parásitos eucariotas: unicelulares y multicelulares
14. Seminarios y conferencias
15. Prácticas de laboratorio
Microbiología Industrial (32 horas teóricas, 8 horas seminarios, 40 horas prácticas)
1. Gestión y organización en el laboratorio microbiológico
§ Introducción a los sistemas de calidad (GMP, GLP, ISO 17025)
§ La organización de un laboratorio de ensayo: las instalaciones, los equipos, los materiales, la documentación y los archivos
2. Métodos analíticos
§ Los métodos según grupos terapéuticos
· Los ensayos microbiológicos según normativa: las normas ISO, The Standard Methods, las farmacopeas, las normas UNE y la bibliografía metodológica básica
· Las especificaciones microbiológicas de los productos industriales
· Los ensayos no rutinarios de productos industriales
· El test de poder conservante
· El test de poder desinfectante
· El test de Ames
3. La validación de los métodos y la cualificación de los equipos
§ Cualificación de los equipos: DQ, IQ, OQ, PQ
§ La validación del método microbiológico
· Introducción a las ICH
· Los documentos ICH referentes a la validación de métodos
· La monografía AEFI de la validación de métodos microbiológicos
· Parámetros que se aplican en la validación de los métodos en microbiología
4. Aplicación de las validaciones a cada tipo de parámetro microbiológico
§ Recuentos
§ Aislamientos/caracterizaciones
§ El challenge test
§ El test de esterilidad
§ El test de endotoxinas
§ Otros parámetros especiales
La biotecnología microbiana (32 horas teóricas, 8 horas seminarios, 40 horas prácticas)
1. Biotecnología y Microbiología Industrial: conceptos generales, alcance, desarrollo histórico y aplicaciones
2. Microorganismos con interés biotecnológico e industrial: diversidad, aislamiento, selección y mantenimiento.
3. Mejora y desarrollo de microorganismos industriales. Mutagénesis y selección de mutantes. Recombinación. Métodos de screening.
4. Mejora y desarrollo de cepas. Tecnología del ADN recombinante (Introducción a la Ingeniería Genética). Análisis Metagenómico
5. Bioprocessing. Aspectos generales de las fermentaciones. Medios de cultivo (generalidades). Diseño y optimización de medios de fermentación (métodos estadísticos). Esterilización. Preparación de inóculos.
6. Bioprocessing. Sistemas de fermentación. Diseño de biorreactores. Escalado
7. Bioprocessing. Recuperación de los productos de fermentación. Tratamiento de residuales. Aspectos económicos
8. Bioprocessing: Producción de metabolitos por células y enzimas inmovilizadas. Biotransformación microbiana
9. La biotecnología aplicada a los procesos sostenidos
10. Procesos de producción mediante química convencional
11. Concepto de procesos industriales ecológicamente sostenidos
12. Concepto de minimización de residuos y reaprovechamiento de los subproductos
13. La Green chemistry
14. La aplicación de la biotecnología a procesos sostenidos:
Antimicrobianos(80 h: 40 h teoría y 40 h prácticas)
TEORÍA:
1. Antibióticos: Clasificación, Espectro y Mecanismos de Acción§ Clasificación: Antibióticos activos sobre la pared celular bacteriana: Mecanismo de acción de los Beta-lactámicos, glicopéptidos y fosfomicina; Antibióticos activos sobre la síntesis de proteínas o ácidos nucleicos: mecanismo de acción de los aminoglicósidos, quinolonas, grupo macrólidos, estreptograminas y lincosamidas (MLS), mecanismo de acción de otros antibióticos.
§ Antibióticos antituberculosos: Moléculas activas frente a micobacterias atípicas y mecanismos de acción, mecanismos de resistencia de las micobacterias, epidemiología.
2. Resistencia de las Bacterias a los Antibióticos
§ Mecanismos de Resistencias: Generalidades, Resistencia a los beta-lactámicos, aminoglicósidos, quinolonas, glicopéptidos, macrólidos y cetólidos, resistencia a otros antimicrobianos.
3.Farmacodinamia de los antibióticos
§ Aspectos fundamentales y prácticos: Concentración Mínima Inhibitoria (CMI), Farmacodinamia de los Aminoglicósidos, Beta-Lactámicos, Fluroquinolonas, Glicopéptidos: Cinética bactericida, efecto post-antibiótico (EPA), resistencia adaptativa.
4. Clasificación clínica de los antibióticos
§ Concentraciones: Cepa Sensible, Intermedia o Resistente. Espectro de Actividad de un Antibiótico (Normas Europeas)
§ Principales fenotipos de resistencia de las bacterias aerobias gram negativas: a los principales antibióticos: Betalactámicos, Aminoglicósidos y Quinolonas (Enterobacterias y Pseudomonas aeruginosa), fenotipos de resistencia de Acinetobacter spp a los antibióticos, fenotipos de resistencia de Haemophilus influenzae, Neisseria meningitidis, Neisseria gonorrhoeae y Moraxella catarrhalis a los antibióticos.
§ Principales fenotipos de resistencia de las bacterias gram positivas: Estafilococos, resistencia a los Beta-Lactámicos, Aminoglicósidos, Tetraciclinas, grupo MLS, Cloramfenicol, Cotrimoxazol, Quinolonas, Fosfomicina, Ácido Fusídico, Rifampicina, Glicopéptidos, Oxazolidinonas, resistencias asociadas. Enterococos: resistencia a los Beta-Lactámicos, Aminoglicósidos, grupo MLS, Glicopéptidos y Oxazolidinonas. Neumococo: resistencia a los Beta-Lactámicos, grupo MLS, Cloramfenicol, Tetraciclinas, Glicopéptidos, Quinolonas, Oxazolidinonas, Rifampicina y Aminoglicósidos.
5. El Antibiograma
§ Introducción, métodos para la realización de un antibiograma, Kirby-Bauer o Difusión en Disco, Macro y Microdilución, Épsilon Test (E test).
§ Realización sistemática del Antibiograma: Principales causas de errores, Control de Calidad. Detección de los principales mecanismos fenotípicos y genotípicos de resistencias actuales en gram positivos y gram negativos (BLEE, MRSA, GISA, Carbapenemasas, resistencias intrínsecas, sinergias de antimicrobianos).
6. Antifúngicos
7. Antivirales
§ Generalidades, viricidas, antivirales, inmunomoduladores, antivirales que impiden la entrada del virus a la célula, antivirales que actúan sobre la fase de replicación del genoma viral, antiretrovirales, inhibidores de la transcriptasa inversa del VIH (nucleósidos, nucleótidos y no nucleósidos, inhibidores de la proteasa IP), inhibidores de la integrasa.
PRÁCTICA:
· Detección, aislamiento y análisis interpretado del antiobiograma indicado para organismos en el coprocultivo.
· Detección, aislamiento y análisis interpretado del antiobiograma indicado para organismos en el urocultivo.
· Detección, aislamiento y análisis interpretado del antiobiograma indicado para organismos en el cultivo de heridas
· Detección, aislamiento y análisis interpretado del antiobiograma indicado para organismos en el cultivo de LCR
· Detección, aislamiento y análisis interpretado del antiobiograma indicado para organismos en el cultivo vaginal
· Detección, aislamiento y análisis interpretado del antiobiograma indicado para organismos en el cultivo de esputo.
· Utilización del antibiograma como método de identificación de microorganismos patógenos (Resistencias cromosómicas, Betalactamasas inducibles)
· Determinación e interpretación de la Concentración Minima Inhibitoria para diversos microorganismos.
· Uso de métodos microbiológicos de sinergias para detección de mecanismos de resistencias asociados (BLEE, Carbapenemasas, Test-D)
· Métodos moleculares tradicionales para detección de resistencias típicas en microorganismos de importancia clínica (MRSA, Klebsiella pneumoniae BLEE, Pseudomonas multirresistentes)
MÓDULO PRÁCTICAS EN EMPRESA O GRUPO EXPERIMENTAL
De las opciones se seleccionará una dependiendo de la disponibilidad del centro de trabajo que acoja al alumno y de la disponibilidad del propio alumno:
1. Prácticas en empresa o en grupo experimental
2. Proyecto innovador de final de curso