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TÉCNICO EN INMUNOLOGÍA - ONLINE

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Objetivos

Los objetivos básicos de este curso es dar a nuestros alumnos una amplia gama de temas en los cuales aprenderán todo lo que se necesita para convertirte en un buen profesional, saber realizar el trabajo de la mejor manera y proporcionar un servicio de calidad.

A quién va dirigido

A todas las personas que quieran tener salida laboral con esta formación , o que simplemente, quieran realizarlo para ampliar los conocimientos sobre el tema.

Requisitos

No se necesitan estudios previos para cursar esta formación.

Temario completo de este curso

UNIDAD DIDÁCTICA 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO
  • Documentación sanitaria.
  • Documentación clínica.
  • Documentación no clínica.
  • Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario.
  • Organigramas de centros sanitarios.
  • Organigrama de un laboratorio.
  • Funciones del personal de un laboratorio.
  • Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
  • Gestión de existencias.
  • Sistemas de almacenamiento.
  • Métodos de valoración de existencias.
  • Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
  • Conservación de equipos.
  • Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
  • Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
  • Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
  • Aplicaciones informáticas.
  • Conocimientos básicos de informática.
  • Tipos y estructura de las bases de datos.
  • Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
  • Estadística básica.
  • Medidas de tendencia central.
  • Medidas de dispersión.
  • Representaciones gráficas de resultados.
  • Información científico_técnica.
  • Estructura de presentación de la información científica.
  • Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.
UNIDAD DIDÁCTICA 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS
  • Muestras biológicas humanas:
  • Concepto de espécimen y de muestra.
  • Características generales de la sangre.
  • * Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar.
  • * Uso de sangre en ayunas.
  • * Utilización de suero o plasma.
  • * Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error.
  • * Anticoagulantes.
  • Características generales de la orina.
  • * Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina.
  • Características generales de las heces.
  • Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos.
  • Obtención de muestras biológicas.
  • Obtención de plasma y suero.
  • Recogida de orina.
  • Recogida de heces.
  • Manipulación de las muestras biológicas.
  • Sistemas de transporte de las muestras.
  • Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
  • Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
  • Conservación de las muestras biológicas.
  • Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
  • Cálculos en la realización de diluciones.
  • Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.
UNIDAD DIDÁCTICA 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS
  • Fisiología de la respuesta inmune.
  • Inmunidad celular.
  • Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
  • Reacción antígeno_anticuerpo.
  • Sistema de complemento.
  • Antígenos de histocompatibilidad.
  • Mecanismos de la respuesta inmune.
  • Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
  • Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno_anticuerpo.
  • Precipitación en medio líquido.
  • Técnicas de precipitación en gel.
  • Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
  • Técnicas de inhibición de la aglutinación.
  • Fijación del complemento.
  • Inmunoensayos.
  • Radioinmunoensayos.
  • Enzimainmunoensayos.
  • Fluoroinmunoensayos.
  • Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
  • Inmunofluorescencia.
  • Microscopio de fluorescencia.
  • Fluoróforos.
  • Inmunofluorescencia directa.
  • Inmunofluorescencia indirecta.
  • Control de calidad de las técnicas inmunológicas.
  • Controles internos y controles externos.
  • Programas de control de calidad.
  • Coeficientes de variación.
  • Gráficos de control de calidad.
UNIDAD DIDÁCTICA 4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA
  • Estructura, función y metabolismo de las sustancias analizables en el laboratorio de Química Clínica.
  • Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas.
  • Enzimología clínica.
  • Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo.
  • Espectrofotometría de absorción y dispersión.
  • Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz.
  • Ley de Lambert_Beer.
  • Transmitancia y absorbancia.
  • Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro.
  • Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado.
  • Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica.
  • Nefelometría y turbidimetría.
  • Espectrofotometría de emisión y absorción atómica.
  • Fundamentos físicos de la fotometría de llama.
  • Componentes de un fotómetro de llama.
  • Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica.
  • Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica.
  • Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica.
  • Técnicas basadas en la detección de potenciales eléctricos.
  • Ecuación de Nernst.
  • Ecuación de Henderson_Hasselbach.
  • Determinación de concentraciones mediante electrodos.
  • Tipos de electrodos.
  • Control de calidad en Química Clínica.
  • Controles internos y controles externos.
  • Programas de control de calidad.
  • Coeficientes de variación.
  • Gráficos de control de calidad.
UNIDAD DIDÁCTICA 5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA
  • Electroforesis.
  • Fundamento teórico de la separación electroforética.
  • Componentes de un equipo de electroforesis.
  • Tipos de soporte.
  • Preparación de los soportes.
  • Aplicación de la muestra.
  • Revelado de las placas de electroforesis.
  • Densitometría.
  • Técnicas electroforéticas especiales.
  • Isoelectroenfoque.
  • Electroforesis en SDS.
  • Inmunoelectroforesis.
  • Electroinmunodifusión.
  • Cromatografía.
  • Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas.
  • Clasificación de las técnicas cromatográficas.
  • Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna.
  • Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas.
  • Mecanismos de separación.
  • Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases.
  • Determinación de fármacos y drogas de abuso.
  • Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso.
  • Monitorización de fármacos terapéuticos.
  • Detección de drogas de abuso.
  • Control de calidad de las técnicas electroforéticas y cromatográficas.
  • Controles internos y controles externos.
  • Programas de control de calidad.
  • Coeficientes de variación.
  • Gráficos de control de calidad.
UNIDAD DIDÁCTICA 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR
  • Estructura y función de los ácidos nucleicos.
  • Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
  • El ácido desoxirribonucleico como material genético.
  • Desnaturalización del ADN.
  • Replicación, transcripción y traducción de la información genética.
  • Principios básicos de la regulación genética.
  • Alteraciones en el ADN: mutaciones.
  • Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos.
  • Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
  • Preparación de las muestras.
  • Microfotografías e identificación de los cromosomas.
  • Técnicas básicas en el diagnóstico molecular.
  • Electroforesis de ácidos nucleicos.
  • Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
  • Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
  • Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
  • Tecnología del ADN recombinante.
  • ADNc.
  • Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
  • Análisis de secuencias de ADN.
  • Transferencia de ADN a células eucariotas.
  • Aplicación de la genética molecular a:
  • Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias.
  • * Análisis molecular directo e indirecto.
  • * Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
  • Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer).
  • * Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
  • * Genes de familia ras.
  • Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
  • Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.
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